Contenidos teóricos y prácticos de la asignatura
Profesora: Laila Moujir Moujir
CLASES MAGISTRALES
Lección 1. La seguridad en el laboratorio de microbiología. Diseño y organización del laboratorio. Clasificación de los microorganismos. Niveles de contención. Barreras primarias y secundarias. Gestión y tratamiento de los residuos.
Lección 2. Técnicas convencionales de diagnóstico bacteriológico. Examen de muestras en fresco y teñidas. Aislamiento y cultivo de bacterias. Medios de cultivo. Medios enriquecidos, selectivos y diferenciales. Métodos convencionales para la identificación bacteriana. Pruebas fisiológicas y bioquímicas. Sistemas multipruebas. Sistemas automatizados.
Lección 3. Diagnóstico inmunológico de las enfermedades infecciosas. Detección de antígenos en muestras clínicas. Técnicas inmunológicas para la identificación de microorganismos. Serodiagnóstico de las enfermedades infecciosas.
Lección 4. Técnicas moleculares aplicadas al diagnóstico microbiológico. Hibridación de ácidos nucleicos. Amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadena de la polimerasa. PCR en tiempo real. Secuenciación de ácidos nucleicos.
Lección 5. Diagnóstico de laboratorio de la enfermedad vírica. Cultivo celulares. Asilamiento, producción y valoración de virus. Efecto citopático, cuerpos de inclusión, hemaglutinación viral. Diagnóstico de principales infecciones virales: hepatitis virales
Lección 6. Diagnóstico de las infecciones urinarias. Etiología. Obtención y transporte de las muestras. Pruebas indirectas. Examen microscópico de sedimento. Tinción de Gram. Urocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 7. Diagnóstico de infecciones gastrointestinales. Etiología. Obtención y transporte de las muestras. Diagnóstico de infecciones gastrointestinales producidas por bacterias. Coprocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. Diagnóstico de virus entéricos. Métodos inmunológicos y moleculares.
Lección 8. Diagnóstico de las infecciones respiratorias. Etiología de las infecciones de las vías respiratorias superiores y del tracto respiratorio inferior. Obtención, transporte y procesado de muestras de exudado faríngeo, esputo, aspirado traqueal, procedimientos invasivos (broncoscopia). Cultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 9. Diagnóstico de infecciones de transmisión sexual y otras infecciones genitales. Úlceras genitales. Uretritis y cervicitis. Vulvovaginitis y vaginosis. Etiología. Obtención, transporte y procesado de las muestras. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 10. Infecciones del sistema nervioso central. Meningitis, encefalitis y abscesos cerebrales. Meningitis bacteriana Meningoencefalitis víricas. Obtención y procesado de la muestra. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 11. Infecciones sistémicas bacterianas. Bacteriemia y sepsis. Hemocultivos: toma de muestra, transporte, procesamiento e interpretación de los resultados.
Lección 12. Infecciones de la piel y tejidos blandos. Osteomelitis, artritis séptica. Obtención y procesado de la muestra. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
SEMINARIOS
SEMINARIO 1. Análisis de la sensibilidad a agentes antimicrobianos. Métodos de difusión y dilución. Sistemas comerciales.
SEMINARIO 2. Detección de resistencias en bacterias Gram positivas y negativas. Cultivos de vigilancia epidemiológica de bacterias resistentes a los antimicrobianos de interés nosocomial.
SEMINARIO 3 y 4. Infecciones respiratorias víricas. Panorama actual
PRÁCTICAS DE LABORATORIO
Práctica 1. Diagnóstico de faringitis estreptocócicas. Recogida y procesamiento de la muestra. Detección e identificación de estreptococos beta-hemóliticos.
Práctica 2. Procesamiento microbiológico de abscesos. Recogida de la muestra y siembra en medios de cultivo. Identificación de Staphyloccus aureus.
Práctica 3. Análisis microbiológico de orina. Recogida y procesamiento de la muestra. Urocultivo: laminocultivos, siembra con asa calibrada. Identificación de aislados.
Práctica 4. Antibiograma. Técnica de difusión en gradiente (Epsilon test).
Práctica 5. Diagnóstico serológico de procesos infecciosos. Diagnóstico de sífilis: prueba RPR (Reagina Plasmática Rápida).
Práctica 6. Análisis microbiológico de muestras ambientales. Aire: técnica de sedimentación y de impacto. Fómites: técnica del hisopo y placas de contacto. Control de desinfección de superficies.
CLASES MAGISTRALES
Lección 1. La seguridad en el laboratorio de microbiología. Diseño y organización del laboratorio. Clasificación de los microorganismos. Niveles de contención. Barreras primarias y secundarias. Gestión y tratamiento de los residuos.
Lección 2. Técnicas convencionales de diagnóstico bacteriológico. Examen de muestras en fresco y teñidas. Aislamiento y cultivo de bacterias. Medios de cultivo. Medios enriquecidos, selectivos y diferenciales. Métodos convencionales para la identificación bacteriana. Pruebas fisiológicas y bioquímicas. Sistemas multipruebas. Sistemas automatizados.
Lección 3. Diagnóstico inmunológico de las enfermedades infecciosas. Detección de antígenos en muestras clínicas. Técnicas inmunológicas para la identificación de microorganismos. Serodiagnóstico de las enfermedades infecciosas.
Lección 4. Técnicas moleculares aplicadas al diagnóstico microbiológico. Hibridación de ácidos nucleicos. Amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadena de la polimerasa. PCR en tiempo real. Secuenciación de ácidos nucleicos.
Lección 5. Diagnóstico de laboratorio de la enfermedad vírica. Cultivo celulares. Asilamiento, producción y valoración de virus. Efecto citopático, cuerpos de inclusión, hemaglutinación viral. Diagnóstico de principales infecciones virales: hepatitis virales
Lección 6. Diagnóstico de las infecciones urinarias. Etiología. Obtención y transporte de las muestras. Pruebas indirectas. Examen microscópico de sedimento. Tinción de Gram. Urocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 7. Diagnóstico de infecciones gastrointestinales. Etiología. Obtención y transporte de las muestras. Diagnóstico de infecciones gastrointestinales producidas por bacterias. Coprocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. Diagnóstico de virus entéricos. Métodos inmunológicos y moleculares.
Lección 8. Diagnóstico de las infecciones respiratorias. Etiología de las infecciones de las vías respiratorias superiores y del tracto respiratorio inferior. Obtención, transporte y procesado de muestras de exudado faríngeo, esputo, aspirado traqueal, procedimientos invasivos (broncoscopia). Cultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 9. Diagnóstico de infecciones de transmisión sexual y otras infecciones genitales. Úlceras genitales. Uretritis y cervicitis. Vulvovaginitis y vaginosis. Etiología. Obtención, transporte y procesado de las muestras. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 10. Infecciones del sistema nervioso central. Meningitis, encefalitis y abscesos cerebrales. Meningitis bacteriana Meningoencefalitis víricas. Obtención y procesado de la muestra. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
Lección 11. Infecciones sistémicas bacterianas. Bacteriemia y sepsis. Hemocultivos: toma de muestra, transporte, procesamiento e interpretación de los resultados.
Lección 12. Infecciones de la piel y tejidos blandos. Osteomelitis, artritis séptica. Obtención y procesado de la muestra. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
SEMINARIOS
SEMINARIO 1. Análisis de la sensibilidad a agentes antimicrobianos. Métodos de difusión y dilución. Sistemas comerciales.
SEMINARIO 2. Detección de resistencias en bacterias Gram positivas y negativas. Cultivos de vigilancia epidemiológica de bacterias resistentes a los antimicrobianos de interés nosocomial.
SEMINARIO 3 y 4. Infecciones respiratorias víricas. Panorama actual
PRÁCTICAS DE LABORATORIO
Práctica 1. Diagnóstico de faringitis estreptocócicas. Recogida y procesamiento de la muestra. Detección e identificación de estreptococos beta-hemóliticos.
Práctica 2. Procesamiento microbiológico de abscesos. Recogida de la muestra y siembra en medios de cultivo. Identificación de Staphyloccus aureus.
Práctica 3. Análisis microbiológico de orina. Recogida y procesamiento de la muestra. Urocultivo: laminocultivos, siembra con asa calibrada. Identificación de aislados.
Práctica 4. Antibiograma. Técnica de difusión en gradiente (Epsilon test).
Práctica 5. Diagnóstico serológico de procesos infecciosos. Diagnóstico de sífilis: prueba RPR (Reagina Plasmática Rápida).
Práctica 6. Análisis microbiológico de muestras ambientales. Aire: técnica de sedimentación y de impacto. Fómites: técnica del hisopo y placas de contacto. Control de desinfección de superficies.
Actividades a desarrollar en otro idioma
La actividad que se desarrollará en inglés será la correspondiente a la consulta bibliográfica necesaria para la realización de
\"otras actividades complementarias\" y para el trabajo personal del alumno.
\"otras actividades complementarias\" y para el trabajo personal del alumno.